Bioss的GLASS gel 中型预制胶（Bis-Tris）是一款安全、快捷、高性能的预制聚丙烯酰胺凝胶，适用于宽分子量的蛋白分离，MOPS和MES Buffer组合使用，更好的实现中大分子量蛋白和小分子量蛋白的分离。

产品特点：

采用自动化的灌胶生产技术，确保了产品质量的高稳定性和重复性。

采用玻璃胶板，有效减少蛋白非特异性吸附，使蛋白条带更为敏锐，清晰。

电泳时间短，在150 V电压下，电泳50-60分钟即可完成。

胶夹打开极为轻松，只需用刀片在胶夹一侧轻轻划一下即可打开。

凝胶中不含SDS，可用于变性和非变性电泳。

兼容市场上主流的Mid电泳槽，如Bio-Rad, Invitrogen。

中型凝胶尺寸，更多上样孔数，便于分析蛋白样品。

提供多种浓度的均一胶和梯度胶（8%，10%，12%，4-12%）。也可以提供特殊浓度的定制服务。

注：使用荧光上样缓冲液处理过的样品，无需剥胶，无需经过染色脱色处理，即可直接在紫外灯或者LED灯下观察到蛋白条带。

基本信息：

保存条件：2-8℃保存，有效期12个月。请勿置于0℃以下，否则会冻凝，产生气泡和裂纹导致报废。

常温运输，常温保存时应放置于阴凉处，避免温度剧烈变化和阳光直射。

产品规格（预制胶选择指导）：

使用说明：

非变性胶（Native-PAGE）

1.非变性胶的蛋白迁移率受到蛋白分子量、蛋白空间结构等多种因素影响，建议实验前进行预实验。

2.将GLASS gel 中型预制胶 Bis-Tris从包装袋中取出。

3.将预制胶固定在电泳槽中。

4.准备非变性电泳缓冲液：取 1000mL 1× MOPS/MES非变性电泳缓冲液。

5.内槽加满电泳液，外槽的电泳液最低 须加到1/3液面处，最高不可漫过胶板，再缓慢地将梳子拔出。

6.上样前请使用移液器吸取电泳缓冲液轻轻吹打加样孔，去除加样孔内残余的胶液。

7.上样：将非变性蛋白样品与 5× 非变性 Loading buffer 进行 4：1 混合均匀。注意枪头不要戳破凝胶，不要过度插入梳孔使胶板变形造成漏液。

8.电泳条件：150 V, 60 min，当溴酚蓝指示带电泳至胶板底部，或实验预定位置时，即可结束电泳。

9.电泳结束，取出凝胶。用刀在侧边硅胶处，沿着两片玻璃的缝隙切开封胶材料，即可打开玻璃板，取胶时，需在凝胶和玻璃条之间，沿着玻璃条划一刀，防止取胶时，发生粘连使胶破碎。（使用美工刀时请注意安全）

10.酸性蛋白（等电点pI<7）正常上样电泳即可。反之，碱性蛋白（等电点pI>7）带正电荷，需将电极插反（红插黑，黑插红），这时上样孔成为正极，样品向下电泳。

变性胶（SDS-PAGE）

1.请参考分离谱图选择合适浓度的预制胶，以帮助您进行更好的蛋白电泳条带分离。

2.将GLASS gel 中型预制胶Bis-Tris从包装袋中取出。

3.将预制胶固定在电泳槽中。

4.准备电泳缓冲液：取 1000mL 1× MOPS/MES变性电泳缓冲液。

5.内槽加满电泳液，外槽的电泳液最低须加到1/3液面处，最高不可漫过胶板，再缓慢地将梳子拔出。

6.上样前请使用移液器吸取电泳缓冲液轻轻吹打加样孔，去除加样孔内残余的胶液。

7.上样：将蛋白样品与 5× 变性Loading buffer进行4：1混合均匀，加热处理。注意枪头不要戳破凝胶，不要过度插入梳孔使胶板变形造成漏液。

8.电泳条件：150 V, 40-50 min，当溴酚蓝指示带电泳至胶板底部，或实验预定位置时，即可结束电泳。

9.电泳结束，取出凝胶。用刀在侧边胶处，沿着两片玻璃的缝隙切开封胶材料，即可打开玻璃板，取凝胶时，需在凝胶和玻璃条之间，沿着玻璃条划一刀，防止取胶时，发生粘连使胶破碎。（使用美工刀时请注意安全）